💧 Uroanálisis y fluidos corporales

1. ¿Por qué se prefiere la primera orina de la mañana para el examen del sedimento?

1. Porque es la más concentrada y conserva mejor los elementos formes que se buscan
2. Porque contiene menos bacterias que cualquier otra muestra recogida durante el día
3. Porque su pH es siempre ácido y estabiliza todos los cristales presentes en ella
4. Porque su volumen es mayor y permite repetir el análisis todas las veces necesarias

La concentración nocturna aumenta la densidad y preserva cilindros y células que en una orina diluida se lisan; por eso es la muestra preferida para el sedimento. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

2. Una orina permanece dos horas a temperatura ambiente sin conservante. ¿Qué cambios cabe esperar?

1. Ausencia de cualquier cambio mientras el recipiente permanezca cerrado con su tapa bien ajustada durante la espera
2. Descenso del pH, aumento de las células y de los cilindros, y ausencia de bacterias en el sedimento examinado
3. Ascenso del pH, pérdida de células y de cilindros, y multiplicación bacteriana progresiva
4. Aumento de la densidad por evaporación y descenso simultáneo de la concentración de todos los solutos disueltos

La ureasa bacteriana convierte la urea en amoníaco y alcaliniza la orina, lo que lisa células y cilindros; además la glucosa y las cetonas descienden. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

3. ¿Qué tipo de muestra se emplea para una prueba de tolerancia o de función que exige tiempo?

1. Una recolección cronometrada con instrucciones precisas de inicio y de fin del período
2. Una muestra aislada tomada en cualquier momento del día sin ninguna instrucción previa por parte del laboratorio
3. Una muestra de chorro medio recogida siempre a primera hora de la mañana y entregada sin ninguna demora
4. Una muestra obtenida siempre por sondaje vesical del paciente, en todos los casos y sin excepción

Los estudios cuantitativos requieren un período delimitado con exactitud: se descarta la primera micción del inicio y se incluye la última del final. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre recolección cronometrada.

4. ¿Qué finalidad tiene añadir un conservante a una orina de recolección prolongada?

1. Facilitar la lectura de la tira reactiva al modificar el color de fondo de la orina
2. Aumentar la concentración de los analitos que se van a medir en la muestra
3. Frenar el crecimiento bacteriano y estabilizar los analitos durante todo el período
4. Permitir que la muestra se conserve a temperatura ambiente de forma indefinida

El conservante elegido depende del analito y algunos interfieren con otras determinaciones, por lo que su selección forma parte del procedimiento. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre recolección cronometrada.

5. ¿Qué información aporta la turbidez de una orina recién emitida?

1. Determina de forma directa la concentración de proteínas presentes en la muestra
2. Orienta hacia células, cristales, bacterias o material amorfo que deben confirmarse en el sedimento
3. Indica siempre la existencia de una infección urinaria activa en el paciente
4. Permite calcular la densidad sin necesidad de emplear ningún instrumento adicional en el examen físico de la muestra recibida

La turbidez es un hallazgo inespecífico que orienta y que el sedimento confirma; en una orina refrigerada suele deberse a la precipitación de cristales o de material amorfo. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

6. ¿Qué diferencia hay entre medir la densidad por refractometría y por tira reactiva?

1. La refractometría responde solo a los electrólitos y la tira a todos los solutos disueltos
2. La refractometría responde a todos los solutos y la tira sobre todo a los electrólitos
3. La refractometría exige un volumen mucho mayor de orina que el área de la tira reactiva
4. La refractometría solo puede aplicarse a orinas alcalinas y la tira solo a las ácidas

El refractómetro mide índice de refracción y se afecta por glucosa, proteínas y medios de contraste; el área de la tira responde a la fuerza iónica, de modo que ambos métodos pueden discrepar. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

7. Un procedimiento indica restar 0,004 de la densidad por cada gramo por decilitro de glucosa. Con densidad de 1,030 y glucosa de 2 g/dL, ¿cuál es la densidad corregida?

1. 1,038, sumando ocho milésimas a la densidad en lugar de restarlas del valor medido
2. 1,026, restando cuatro milésimas a la densidad medida por un solo gramo de glucosa
3. 1,022, restando ocho milésimas a la densidad medida según la regla del enunciado
4. 1,030, sin corrección, porque la glucosa no influye en la densidad de la orina

El exceso de glucosa es de 2 gramos por decilitro y la regla resta 0,004 por cada uno: 1,030 menos 0,008 da 1,022. La regla y su aplicación se declaran en el procedimiento. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

8. ¿Qué debe hacerse antes de informar un color inusual de la orina?

1. Emitir el diagnóstico probable que corresponda a ese color en el informe
2. Confirmar que no procede de un pigmento, un alimento o un fármaco declarado
3. Rechazar la muestra por considerar que un color inusual la invalida siempre
4. Repetir la recolección tres veces hasta obtener un color habitual de la orina

El color se describe con la terminología del procedimiento y su interpretación exige considerar pigmentos endógenos, alimentos y sustancias administradas; el diagnóstico no corresponde al laboratorio. Fuente: documentos de consenso CLSI y la Ley 234-1992.

9. ¿A qué proteína responde principalmente el área de proteínas de la tira reactiva?

1. A la mucoproteína que forma la matriz de los cilindros dentro del túbulo renal
2. A las cadenas ligeras libres, que detecta con la máxima sensibilidad del área
3. A las globulinas de alto peso molecular presentes en la orina del paciente
4. A la albúmina, con una sensibilidad mucho menor frente a otras proteínas urinarias

El principio del error proteico de los indicadores responde sobre todo a la albúmina, de modo que la tira puede no detectar cadenas ligeras y exige métodos complementarios. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

10. ¿Qué situación produce un falso positivo en el área de proteínas de la tira?

1. Una concentración muy elevada de ácido ascórbico presente en la muestra
2. Una orina muy ácida con densidad por debajo del intervalo habitual del método
3. Una orina muy alcalina o contaminada con desinfectante de amonio cuaternario
4. Una temperatura de la muestra inferior a la del ambiente en el momento de la lectura

El pH muy alcalino desborda el tampón del área e imita el cambio de color de las proteínas; algunos desinfectantes producen el mismo efecto. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

11. ¿Por qué el área de sangre de la tira puede ser positiva sin eritrocitos en el sedimento?

1. Porque el área de sangre reacciona con las proteínas presentes en cualquier orina con independencia de su origen
2. Porque detecta también hemoglobina y mioglobina libres además de los eritrocitos intactos
3. Porque los eritrocitos siempre se lisan durante la centrifugación del sedimento antes de la lectura microscópica
4. Porque el área de sangre se activa con cualquier pigmento que colorea la orina

El área detecta la actividad seudoperoxidasa del grupo hemo, presente en eritrocitos intactos, en hemoglobina libre y en mioglobina; la correlación con el sedimento es obligada. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

12. ¿Qué efecto tiene el ácido ascórbico sobre varias áreas de la tira reactiva?

1. Puede producir falsos negativos en las áreas basadas en reacciones de oxidación
2. Puede producir falsos positivos en todas las áreas de la tira sin excepción alguna
3. No tiene ningún efecto porque se elimina por completo durante la micción
4. Solo afecta al área de densidad y a ninguna de las demás áreas de la tira

El ácido ascórbico es un reductor que compite en las reacciones con peroxidasa u oxidasa, y produce falsos negativos sobre todo en glucosa y en sangre. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

13. ¿Qué condición se requiere para que el área de nitritos resulte positiva?

1. Bacterias capaces de reducir nitrato y un tiempo suficiente de permanencia en la vejiga
2. Presencia de leucocitos íntegros en cantidad elevada dentro de la muestra de orina que se está analizando en el área
3. Una orina fuertemente alcalina con densidad por encima del intervalo habitual del método utilizado en el área
4. La ausencia total de bacterias en la orina recogida por el propio paciente en su propio domicilio particular

El área depende de la conversión bacteriana de nitrato a nitrito y de que el nitrato dietético esté presente; un resultado negativo no descarta infección. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

14. ¿Qué detecta el área de esterasa leucocitaria?

1. Los eritrocitos íntegros presentes en la muestra de orina que se está analizando
2. Una enzima de los granulocitos, presente incluso cuando las células ya se han lisado
3. Las bacterias productoras de ureasa en la orina que se examina con la tira
4. Los cilindros hialinos formados en el túbulo renal del paciente estudiado

La esterasa granulocítica permanece detectable tras la lisis celular, de modo que el área puede ser positiva con un sedimento pobre en leucocitos. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

15. ¿Por qué la tira reactiva debe leerse en los tiempos indicados por el fabricante?

1. Porque las reacciones tienen tiempos óptimos y la lectura tardía altera varios resultados
2. Porque el color de la tira se pierde por completo pasados unos pocos segundos
3. Porque la normativa exige leer todas las áreas en un mismo instante exacto
4. Porque el fabricante no garantiza el producto si la lectura no es instantánea en el momento exacto de la inmersión

Cada área tiene su tiempo de reacción; leer antes o después produce resultados falsos, en especial en las áreas de esterasa y de nitritos. Fuente: documentos de consenso CLSI y el inserto del fabricante.

16. ¿Qué precaución evita el arrastre entre áreas de la tira reactiva?

1. Sumergir la tira durante al menos treinta segundos antes de retirarla
2. Retirar el exceso de orina apoyando el borde de la tira tras sumergirla
3. Leer las áreas con la tira en posición vertical para acelerar el escurrido
4. Secar la tira con papel absorbente frotando su superficie tras la inmersión

El exceso de orina que corre entre almohadillas mezcla reactivos y produce colores falsos; se elimina apoyando el borde, sin frotar las áreas. Fuente: documentos de consenso CLSI y el inserto del fabricante.

17. ¿Qué control de calidad exige el uso de tiras reactivas de orina?

1. Contrastar el resultado con el de otra tira de un lote distinto cada día en el mismo turno de trabajo
2. Comprobar únicamente que el envase esté dentro de su fecha de caducidad
3. Verificar solo el color de las almohadillas antes de sumergir cada tira en el frasco correspondiente
4. Procesar controles de dos niveles con la periodicidad definida en el procedimiento

El control con material de reactividad conocida verifica el desempeño de las tiras y del lector; su frecuencia y sus criterios figuran en el procedimiento. Fuente: requisitos de CLIA y documentos de consenso CLSI.

18. Se centrifugan 12 mL de orina y el sedimento se resuspende en 1 mL. ¿Cuál es el factor de concentración?

1. 0,08, resultado de dividir el volumen de resuspensión entre el inicial antes de examinar el sedimento
2. 1, porque el volumen final de resuspensión es de un solo mililitro con independencia del volumen inicial
3. 12, resultado de dividir el volumen inicial entre el volumen de resuspensión
4. 13, resultado de sumar el volumen inicial y el de resuspensión final empleados en el procedimiento

El factor de concentración es el cociente entre el volumen centrifugado y el volumen en que se resuspende: 12 entre 1 da 12. Ese factor debe ser constante para que los informes sean comparables. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

19. ¿Por qué la centrifugación del sedimento debe estandarizarse en velocidad y tiempo?

1. Porque el tiempo de centrifugación determina el pH final de la orina analizada
2. Porque una velocidad mayor mejora siempre la calidad del sedimento obtenido
3. Porque de ello depende qué elementos sedimentan y la comparabilidad entre informes
4. Porque la normativa fija una velocidad única para todos los laboratorios del país

Variar velocidad o tiempo cambia la proporción de elementos recuperados y hace incomparables los resultados; una fuerza excesiva además destruye cilindros. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

20. ¿Qué indica la presencia de cilindros en el sedimento urinario?

1. Un origen renal del hallazgo, porque se forman dentro del túbulo a partir de mucoproteína
2. Un origen en la vía urinaria baja, porque se forman en la vejiga durante el llenado de la orina antes de la micción
3. Una contaminación de la muestra durante la recolección realizada por el paciente en su propio domicilio particular
4. Un artefacto de la centrifugación que carece por completo de significado clínico para el paciente estudiado

Los cilindros se moldean en la luz tubular sobre la mucoproteína de Tamm-Horsfall, de modo que su contenido localiza el hallazgo en el riñón. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

21. ¿Qué diferencia hay entre un cilindro hialino y uno granuloso?

1. El hialino solo aparece en orinas alcalinas y el granuloso únicamente en las ácidas
2. El hialino contiene material degradado y el granuloso es de matriz casi transparente en el sedimento ya centrifugado
3. El hialino es de matriz proteica casi transparente y el granuloso contiene material degradado
4. El hialino se ve solo con contraste de fases y el granuloso solo con luz polarizada compensada del microscopio

El cilindro hialino es la forma más simple y de bajo índice de refracción; los gránulos proceden de la degeneración de células atrapadas o de proteínas. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

22. ¿Qué significa hallar un cilindro que contiene leucocitos?

1. Demuestra la existencia de una infección bacteriana confirmada del riñón
2. Indica una contaminación vaginal de la muestra durante su recolección
3. Localiza el proceso inflamatorio en el riñón y no en la vía urinaria inferior
4. Carece de significado porque los leucocitos se adhieren al azar a la matriz

La matriz se forma en el túbulo y atrapa lo que allí haya, por lo que un cilindro leucocitario sitúa el hallazgo en el parénquima renal; el diagnóstico corresponde al médico. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

23. ¿Cómo se distinguen los eritrocitos de las levaduras en el sedimento?

1. Las levaduras muestran gemación y no se lisan con ácido acético diluido
2. Los eritrocitos muestran gemación y las levaduras se lisan con ácido acético
3. Las levaduras son siempre mayores y presentan un núcleo bien visible
4. Los eritrocitos presentan pared celular refringente y las levaduras no la tienen

La gemación y la resistencia a la lisis por ácido acético separan las levaduras de los eritrocitos, que sí se lisan y carecen de gemación. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

24. ¿Qué significa hallar abundantes células epiteliales escamosas en una orina?

1. Demuestra que la muestra procede de una recolección por sondaje vesical
2. Indica una lesión grave del epitelio tubular renal del paciente estudiado
3. Confirma la existencia de una infección urinaria activa que exige urocultivo
4. Sugiere contaminación de la muestra por la zona perineal durante la recolección

Las escamosas proceden de la uretra distal y de la zona perineal; su abundancia orienta a una recolección deficiente y puede justificar solicitar otra muestra. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

25. ¿Qué dato es imprescindible para interpretar los cristales de un sedimento?

1. El pH de la orina, porque cada familia de cristales precipita en un intervalo distinto
2. El color de la orina, que determina qué cristales pueden llegar a formarse en ella
3. La densidad medida con la tira reactiva en el examen químico de la muestra
4. El volumen total de la micción recogida por el paciente en el recipiente

Los cristales de orina ácida y los de orina alcalina forman dos familias distintas; informar un cristal sin el pH hace la interpretación imposible. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

26. ¿Qué actitud exige el hallazgo de un cristal considerado siempre anormal?

1. Confirmarlo por otro método y comunicarlo según el procedimiento del laboratorio
2. Informarlo sin ninguna confirmación porque su morfología es inconfundible
3. Ignorarlo porque los cristales carecen siempre de significado clínico alguno
4. Repetir la recolección hasta que el cristal deje de aparecer en el sedimento

Un pequeño grupo de cristales nunca es un hallazgo banal y su presencia exige confirmación y comunicación conforme al procedimiento escrito. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

27. ¿Por qué la refrigeración de una orina puede complicar la lectura del sedimento?

1. Porque eleva el pH de la orina y lisa todos los leucocitos presentes en ella durante ese mismo período de espera
2. Porque destruye por completo todos los cilindros presentes en la muestra refrigerada a lo largo de toda la noche
3. Porque favorece la precipitación de cristales y de material amorfo que enturbia la muestra
4. Porque convierte los eritrocitos en levaduras difíciles de identificar al microscopio del laboratorio de uroanálisis

El frío reduce la solubilidad de varias sales y produce precipitados que dificultan el examen; atemperar la muestra antes de analizarla suele resolverlo. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

28. ¿Qué ventaja aporta el contraste de fases en el examen del sedimento?

1. Sustituye por completo a la tinción supravital del sedimento examinado
2. Permite identificar cristales por su birrefringencia sin necesidad de polarizador
3. Aumenta el aumento total del microscopio sin cambiar el objetivo empleado
4. Mejora la visualización de elementos poco refringentes como los cilindros hialinos

El contraste de fases realza estructuras de bajo índice de refracción que pasan desapercibidas con campo claro; la birrefringencia requiere luz polarizada. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

29. ¿Para qué se emplea la luz polarizada compensada en el estudio de fluidos?

1. Para diferenciar cristales según su forma y el signo de su birrefringencia
2. Para aumentar el brillo del campo y facilitar el recuento celular manual
3. Para teñir de forma selectiva los leucocitos presentes en la preparación
4. Para medir la densidad del líquido examinado sin emplear refractómetro

El compensador permite determinar el signo de la birrefringencia, criterio clave en el estudio de cristales del líquido sinovial. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre análisis de líquidos corporales.

30. ¿Cómo se informan habitualmente los elementos del sedimento urinario?

1. Siempre en unidades por microlitro con independencia del elemento observado
2. Por campo de gran aumento o por campo de pequeño aumento, según el elemento y el procedimiento
3. Solo de forma cualitativa, indicando presencia o ausencia de cada elemento
4. Únicamente como porcentaje del total de elementos observados en la preparación que se ha examinado en el sedimento

Los cilindros suelen informarse por campo de pequeño aumento y las células por campo de gran aumento, con la convención declarada en el procedimiento. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis.

31. ¿Qué limitación tienen los analizadores automatizados de sedimento urinario?

1. No requieren ningún control de calidad porque su clasificación es automática
2. Sustituyen por completo al examen microscópico en cualquier tipo de muestra
3. Pueden clasificar mal elementos poco frecuentes y exigen revisión manual según criterios definidos
4. Solo pueden analizar orinas de pacientes ambulatorios y no de pacientes ingresados del centro asistencial donde se instalan

Los sistemas automatizados agilizan el trabajo pero necesitan reglas de revisión manual documentadas, sobre todo ante elementos atípicos. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre uroanálisis automatizado.

32. ¿Qué debe definir el laboratorio al implantar un analizador de sedimento?

1. El precio que se cobrará por cada uroanálisis realizado con el nuevo sistema instalado en el área de trabajo
2. El número máximo de muestras que puede procesar cada analista por turno de trabajo en el área de uroanálisis
3. Criterios escritos de cuándo el resultado automatizado exige revisión microscópica
4. La marca de tiras reactivas que deben emplear todos los centros de la región que atienden a la misma población

Los criterios de revisión traducen las alertas del instrumento en una decisión reproducible; deben validarse y documentarse antes de su uso. Fuente: requisitos de CLIA y documentos de consenso CLSI.

33. ¿Cómo se distribuyen habitualmente los tubos de líquido cefalorraquídeo?

1. El último tubo se destina siempre al recuento celular por ser el más limpio
2. Todos al mismo destino, ya que el orden de los tubos no influye en el resultado final del análisis del líquido
3. Solo se emplea el primer tubo y el resto se descarta al terminar la punción
4. Por orden de extracción y por destino, con el de microbiología protegido de la contaminación

La distribución ordenada de los tubos reduce el efecto de la contaminación inicial de la punción; el orden y el destino los fija el procedimiento del centro. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre análisis de líquidos corporales.

34. Se cuentan 40 leucocitos en los cuatro cuadros grandes de una cámara con muestra sin diluir. Cada cuadro mide 1 mm2 y la profundidad es 0,1 mm. ¿Cuál es el recuento por microlitro?

1. 400 por microlitro, multiplicando las células contadas por el número de cuadros grandes examinados en la cámara
2. 40 por microlitro, tomando el número de células contadas como resultado final del recuento en la cámara
3. 10 por microlitro, dividiendo las células contadas entre el número de cuadros grandes que se han examinado
4. 100 por microlitro, dividiendo las células contadas entre el volumen total examinado

El volumen contado es 4 mm2 por 0,1 mm, es decir 0,4 microlitros; 40 dividido entre 0,4 da 100 por microlitro. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre recuento celular en líquidos corporales.

35. Un líquido con punción traumática tiene 100 leucocitos y 10 000 eritrocitos por microlitro. La sangre del paciente tiene 8 000 leucocitos y 4 000 000 de eritrocitos por microlitro. ¿Cuál es el recuento corregido de leucocitos?

1. 20 por microlitro, tomando solo los leucocitos aportados por la sangre periférica
2. 80 por microlitro, tras restar los leucocitos aportados por la sangre periférica
3. 100 por microlitro, porque la corrección no se aplica en punciones traumáticas
4. 120 por microlitro, sumando los leucocitos aportados por la sangre periférica

Los leucocitos aportados son 8 000 multiplicado por 10 000 entre 4 000 000, es decir 20; restados de 100 dan 80 por microlitro. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre análisis de líquido cefalorraquídeo.