⚗️ Química clínica

1. ¿Qué relación establece la ley de Beer en un método fotométrico?

1. La absorbancia es proporcional a la concentración, al paso de luz y a la absortividad
2. La transmitancia es directamente proporcional a la concentración del analito medido
3. La absorbancia es inversamente proporcional al paso de luz de la cubeta empleada
4. La concentración es proporcional al logaritmo de la absortividad molar del compuesto

La ley de Beer expresa que la absorbancia depende del producto de la absortividad, el paso de luz y la concentración. La transmitancia guarda con la concentración una relación logarítmica inversa, no directa. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre fotometría y textos de referencia de química clínica.

2. Una solución transmite el 25 % de la luz incidente. ¿Cuál es su absorbancia?

1. 4,000, aplicando el inverso del por ciento de transmitancia expresado en veces
2. 0,250, tomando directamente el valor de la transmitancia expresado en decimales
3. 1,398, tomando el logaritmo del por ciento de transmitancia sin restarlo de dos
4. 0,602, aplicando la resta del logaritmo del por ciento de transmitancia a dos

La absorbancia es dos menos el logaritmo decimal del por ciento de transmitancia: dos menos 1,398 da 0,602. Los distractores corresponden a pasos intermedios o a operaciones sin sentido físico. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI sobre fotometría.

3. ¿Qué absorbancia corresponde a una transmitancia del 10 %?

1. 1,000, porque el logaritmo de diez es uno y se resta de dos
2. 0,100, porque la transmitancia en decimales es una décima
3. 2,000, porque toda transmitancia baja da la absorbancia máxima
4. 0,900, porque se resta la transmitancia decimal de la unidad

Aplicando la relación entre absorbancia y transmitancia, dos menos el logaritmo de diez da uno. La absorbancia no se obtiene restando la transmitancia decimal de la unidad. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI sobre fotometría.

4. Un estándar de 100 mg/dL da absorbancia de 0,500 y la muestra da 0,400 en las mismas condiciones. ¿Cuál es la concentración de la muestra?

1. 20 mg/dL, resultado de multiplicar la diferencia de absorbancias por la concentración
2. 125 mg/dL, resultado de invertir la razón entre las absorbancias del estándar y la muestra
3. 90 mg/dL, resultado de restar la diferencia de absorbancias a la concentración conocida
4. 80 mg/dL, aplicando la proporción entre las dos absorbancias por la concentración conocida

En un método comparativo la concentración se obtiene multiplicando la concentración del estándar por el cociente de absorbancias: 100 por 0,400 entre 0,500 da 80 mg/dL. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI sobre calibración.

5. ¿Qué finalidad tiene el blanco de reactivo en una medición fotométrica?

1. Descontar la absorbancia propia del reactivo y del sistema óptico empleado
2. Verificar la exactitud del calibrador utilizado en la curva de esa jornada
3. Comprobar que la lámpara emite a la longitud de onda seleccionada por el método
4. Determinar la absortividad molar del producto coloreado que genera la reacción

El blanco establece el cero de absorbancia del sistema con reactivo y sin muestra, de modo que lo medido corresponde al producto de la reacción. La verificación del calibrador y de la lámpara son controles distintos. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre fotometría y requisitos de CLIA.

6. ¿Por qué una absorbancia muy alta puede dar un resultado falsamente bajo?

1. Porque fuera del intervalo lineal la respuesta deja de ser proporcional
2. Porque el detector se satura y devuelve siempre el valor máximo del intervalo
3. Porque el paso de luz de la cubeta se reduce cuando la muestra es muy concentrada
4. Porque la absortividad molar disminuye a medida que aumenta la concentración

Por encima del límite de linealidad la relación entre absorbancia y concentración se aplana y la muestra debe diluirse y reanalizarse con su factor. El paso de luz y la absortividad son constantes del sistema. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre intervalo informable y linealidad.

7. ¿Qué diferencia hay entre un método de punto final y uno cinético?

1. El de punto final requiere blanco de muestra y el cinético nunca requiere ningún blanco
2. El de punto final mide en dos longitudes de onda y el cinético mide en una sola longitud
3. El de punto final mide un producto estable y el cinético mide el cambio por unidad de tiempo
4. El de punto final se usa solo para enzimas y el cinético solo para sustratos y metabolitos

El método de punto final lee cuando la reacción se ha completado; el cinético mide la pendiente de la variación de absorbancia y es sensible a temperatura, tiempo de retardo e intervalo de lectura. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI.

8. Un método cinético da un cambio de absorbancia de 0,050 por minuto, con absortividad molar de 6 220, paso de luz de 1 cm, volumen total de 1,0 mL y volumen de muestra de 0,02 mL. ¿Cuál es la actividad en unidades por litro?

1. 8 U/L, dividiendo el cambio por la absortividad sin aplicar el factor de volumen
2. 402 U/L, dividiendo el cambio por la absortividad y aplicando el factor de volumen
3. 311 U/L, empleando un volumen de muestra de 0,025 mL en lugar del indicado
4. 50 U/L, multiplicando el cambio de absorbancia por mil sin más correcciones

El cálculo es el cambio por minuto dividido entre la absortividad, multiplicado por el cociente entre volumen total y volumen de muestra y por un millón: 0,050 entre 6 220, por 50, por un millón, da 402 unidades por litro. Fuente: procedimientos de referencia de la IFCC y documentos CLSI sobre enzimología.

9. ¿Por qué los métodos enzimáticos exigen un control estricto de la temperatura?

1. Porque el reactivo cambia de color de manera espontánea a temperatura ambiente
2. Porque la velocidad de la reacción enzimática depende de forma acusada de la temperatura
3. Porque la longitud de onda de lectura se desplaza al variar la temperatura del sistema
4. Porque la absortividad molar del producto se duplica por cada grado de aumento

La actividad enzimática varía marcadamente con la temperatura, por lo que las condiciones deben ser las especificadas y estar controladas. La longitud de onda y la absortividad no dependen de la temperatura de ese modo. Fuente: procedimientos de referencia de la IFCC y documentos de consenso CLSI.

10. ¿Qué es el tiempo de retardo en un ensayo enzimático cinético?

1. El intervalo inicial que se excluye de la lectura hasta alcanzar el estado estacionario
2. El tiempo que transcurre entre la extracción de la muestra y su llegada al laboratorio
3. El tiempo máximo que el reactivo permanece estable una vez reconstituido en el equipo
4. El intervalo entre dos calibraciones sucesivas exigido por el fabricante del reactivo

El tiempo de retardo permite que la reacción alcance velocidad constante antes de empezar a medir la pendiente; leer antes daría una velocidad no representativa. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre enzimología y procedimientos de la IFCC.

11. ¿Qué diferencia hay entre la medición directa e indirecta de sodio con electrodo selectivo?

1. La directa mide la muestra sin diluir y la indirecta la diluye antes de medir
2. La directa emplea una membrana de vidrio y la indirecta una membrana polimérica
3. La directa requiere suero y la indirecta requiere obligatoriamente plasma heparinizado
4. La directa mide concentración total y la indirecta mide únicamente actividad iónica

La medición indirecta diluye la muestra, de modo que el resultado se refiere al volumen total del plasma; con exceso de lípidos o proteínas la fase acuosa es menor y aparece la seudohiponatremia, que la medición directa no muestra. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre electrodos selectivos de iones.

12. Un paciente con hiperlipidemia intensa presenta sodio bajo por método indirecto y normal por método directo. ¿Cómo se explica?

1. Por seudohiponatremia debida al desplazamiento de volumen que causan los lípidos
2. Por consumo de sodio durante el almacenamiento prolongado de la muestra en frío
3. Por interferencia de los triglicéridos con la membrana selectiva del electrodo
4. Por hemólisis parcial que libera sodio intracelular a la fracción plasmática

Los lípidos ocupan volumen plasmático sin contener sodio; al diluir para la medición indirecta el resultado se subestima, mientras la medición directa sobre fase acuosa no se afecta. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre interferencias en electrodos selectivos.

13. Con sodio de 140 mEq/L, cloruro de 100 mEq/L y bicarbonato de 24 mEq/L, ¿cuál es el hiato aniónico?

1. 264 mEq/L, sumando los tres electrólitos indicados en el enunciado
2. 64 mEq/L, restando del sodio únicamente el valor del bicarbonato
3. 16 mEq/L, restando del sodio la suma de cloruro y bicarbonato
4. 40 mEq/L, restando del sodio únicamente el valor del cloruro medido

El hiato aniónico se calcula restando del sodio la suma de cloruro y bicarbonato: 140 menos 124 da 16 mEq/L. Algunos laboratorios incluyen el potasio, y esa variante se declara en el procedimiento. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI.

14. Con sodio de 132 mEq/L, cloruro de 92 mEq/L y bicarbonato de 12 mEq/L, ¿cuál es el hiato aniónico?

1. 104 mEq/L, valor que resultaría de sumar cloruro y bicarbonato entre sí
2. 20 mEq/L, valor que resultaría de emplear un bicarbonato de 20 mEq/L
3. 40 mEq/L, valor que resultaría de restar únicamente el cloruro al sodio
4. 28 mEq/L, valor que corresponde a la resta de la suma de aniones al sodio

Restando del sodio la suma de cloruro y bicarbonato, 132 menos 104 da 28 mEq/L. El resultado se interpreta junto con los demás datos y su lectura clínica corresponde al médico. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI.

15. Con sodio de 140 mEq/L, glucosa de 90 mg/dL y nitrógeno ureico de 14 mg/dL, ¿cuál es la osmolalidad calculada?

1. 244 mOsm/kg, sumando el sodio sin duplicar más los otros dos términos del cálculo
2. 290 mOsm/kg, sumando el doble del sodio, la glucosa entre 18 y el nitrógeno entre 2,8
3. 384 mOsm/kg, sumando el doble del sodio más la glucosa y el nitrógeno sin dividir
4. 280 mOsm/kg, considerando únicamente la contribución del doble del sodio medido

El cálculo suma el doble del sodio, la glucosa dividida entre dieciocho y el nitrógeno ureico dividido entre dos coma ocho: 280 más 5 más 5 da 290 mOsm/kg. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI sobre osmolalidad.

16. Con sodio de 145 mEq/L, glucosa de 180 mg/dL y nitrógeno ureico de 28 mg/dL, ¿cuál es la osmolalidad calculada?

1. 310 mOsm/kg
2. 300 mOsm/kg, valor que resultaría de omitir la contribución del nitrógeno ureico
3. 353 mOsm/kg, valor que resultaría de sumar la glucosa completa sin dividir entre 18
4. 290 mOsm/kg, valor que resultaría de considerar solo el doble del sodio del enunciado

El cálculo da 290 más 10 más 10, es decir 310 mOsm/kg. La diferencia con la osmolalidad medida por descenso crioscópico constituye el hiato osmolal. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI sobre osmolalidad.

17. La osmolalidad medida es 320 mOsm/kg y la calculada 290 mOsm/kg. ¿Cuál es el hiato osmolal y qué significa?

1. 610 mOsm/kg, que corresponde a la suma de la osmolalidad medida y de la calculada
2. 30 mOsm/kg, que indica presencia de solutos osmóticamente activos no incluidos en el cálculo
3. 1,10, que corresponde al cociente entre la osmolalidad medida y la osmolalidad calculada del paciente
4. 30 mOsm/kg, que indica un error del osmómetro y obliga a repetir siempre la medición de la muestra

El hiato osmolal es la diferencia entre la osmolalidad medida y la calculada, y sugiere solutos no contemplados en la fórmula. Su interpretación clínica corresponde al médico. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI.

18. Un procedimiento indica sumar 1,6 mEq/L al sodio por cada 100 mg/dL de glucosa por encima de 100 mg/dL. Con sodio de 125 mEq/L y glucosa de 600 mg/dL, ¿cuál es el sodio corregido?

1. 117 mEq/L, restando ocho al sodio medido en lugar de sumarlo
2. 141 mEq/L, sumando dieciséis al sodio medido por exceso de corrección
3. 129 mEq/L, sumando cuatro al sodio medido por defecto de corrección
4. 133 mEq/L, sumando ocho al sodio medido según la regla del enunciado

El exceso de glucosa es de 500 mg/dL, es decir cinco tramos de cien; cinco por 1,6 da 8 mEq/L, que sumados a 125 dan 133 mEq/L. La regla se aplica tal como la define el procedimiento del laboratorio. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI.

19. ¿A cuántos milimoles por litro equivale una glucosa de 126 mg/dL, con factor de conversión 18?

1. 2 268 mmol/L, multiplicando el valor convencional por el factor indicado
2. 7,0 mmol/L, dividiendo el valor convencional entre el factor indicado
3. 0,14 mmol/L, dividiendo el factor entre el valor convencional del enunciado
4. 12,6 mmol/L, dividiendo el valor convencional entre diez en lugar de dieciocho

La conversión de glucosa de unidades convencionales al Sistema Internacional divide entre 18: 126 entre 18 da 7,0 mmol/L. Fuente: recomendaciones de la IFCC sobre unidades y documentos de consenso CLSI.

20. Una creatinina de 1,2 mg/dL equivale, con factor 88,4, a cuántos micromoles por litro?

1. 106 µmol/L, multiplicando el valor convencional por el factor de conversión
2. 74 µmol/L, dividiendo el valor convencional entre el factor de conversión
3. 1,2 µmol/L, porque la creatinina no cambia de valor al cambiar de unidades
4. 884 µmol/L, multiplicando el factor de conversión por diez en lugar de por 1,2

La conversión de creatinina multiplica por 88,4: 1,2 por 88,4 da 106,1 µmol/L, que se informa como 106. Fuente: recomendaciones de la IFCC sobre unidades y documentos de consenso CLSI.

21. Un colesterol total de 200 mg/dL equivale, con factor 38,67, a cuántos milimoles por litro?

1. 0,19 mmol/L, dividiendo el factor indicado entre el valor convencional
2. 7 734 mmol/L, multiplicando el valor convencional por el factor indicado
3. 5,17 mmol/L, dividiendo el valor convencional entre el factor indicado
4. 2,00 mmol/L, dividiendo el valor convencional entre cien por comodidad

La conversión de colesterol divide entre 38,67: 200 entre 38,67 da 5,17 mmol/L. Cada analito tiene su propio factor, derivado de su masa molar. Fuente: recomendaciones de la IFCC sobre unidades y documentos CLSI.

22. Con un calcio de 10 mg/dL, masa atómica 40 y valencia 2, ¿cuántos miliequivalentes por litro corresponden?

1. 5 mEq/L, aplicando la conversión por peso equivalente y el paso a litros
2. 10 mEq/L, porque los miligramos por decilitro coinciden con los miliequivalentes
3. 2,5 mEq/L, dividiendo entre la masa atómica y multiplicando por la valencia
4. 20 mEq/L, multiplicando el valor por la valencia sin dividir por el equivalente

El peso equivalente es la masa atómica dividida entre la valencia, es decir 20; 10 mg/dL equivalen a 100 mg/L, y 100 entre 20 da 5 mEq/L. Fuente: textos de referencia de química clínica y recomendaciones de la IFCC.

23. ¿Cuántos gramos de una sal de masa molar 58,44 se necesitan para preparar 500 mL de una solución 0,15 molar?

1. 4,38 g, multiplicando molaridad por volumen en litros y por la masa molar
2. 8,77 g, empleando un litro en lugar del volumen indicado en el enunciado
3. 0,15 g, tomando la molaridad como masa sin aplicar la masa molar de la sal
4. 29,22 g, multiplicando la masa molar por el volumen sin usar la molaridad

El cálculo es 0,15 mol por litro multiplicado por 0,5 litros y por 58,44 gramos por mol, lo que da 4,383 gramos. Fuente: textos de referencia de química analítica y documentos CLSI sobre preparación de reactivos.

24. ¿Qué volumen de una solución 1,0 molar se necesita para preparar 100 mL de solución 0,1 molar?

1. 0,1 mL, multiplicando la concentración final por el volumen final de forma directa y sin despejar
2. 1 mL, dividiendo el volumen final entre cien en lugar de aplicar la igualdad de los productos
3. 100 mL, porque el volumen no cambia al modificar únicamente la concentración
4. 10 mL, aplicando la igualdad entre concentración inicial por volumen y final por volumen

Aplicando la igualdad de producto de concentración por volumen: 1,0 por el volumen buscado igual a 0,1 por 100, de donde el volumen es 10 mL, que se completa hasta 100 mL. Fuente: textos de referencia de química analítica y documentos CLSI.

25. ¿Cuál es la concentración porcentual peso en volumen de una solución con 5 g de soluto en 250 mL?

1. 5 % p/v, tomando directamente la masa del soluto como porcentaje
2. 2 % p/v, expresando los gramos por cada cien mililitros de solución
3. 20 % p/v, dividiendo el volumen entre la masa del soluto empleada
4. 0,02 % p/v, expresando el resultado en gramos por litro de solución

La concentración porcentual peso en volumen expresa gramos por cien mililitros: 5 gramos en 250 mL equivalen a 2 gramos por cada cien, es decir 2 % p/v. Fuente: textos de referencia de química analítica y documentos CLSI.

26. Se mezclan 0,5 mL de suero con 4,5 mL de diluyente y el resultado medido es 45 mg/dL. ¿Qué debe informarse?

1. 450 mg/dL, multiplicando el resultado por el factor de dilución de uno a diez
2. 45 mg/dL, porque el analizador ya corrige de forma automática toda dilución manual
3. 4,5 mg/dL, dividiendo el resultado por el factor de dilución en lugar de multiplicar
4. 405 mg/dL, multiplicando el resultado por nueve en lugar de por el factor correcto

El volumen total es 5 mL para 0,5 mL de suero, es decir una dilución uno a diez; el resultado se multiplica por diez y da 450 mg/dL, siempre que quede dentro del intervalo informable. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre diluciones e intervalo informable.

27. Se realizan cinco diluciones seriadas al medio partiendo de la muestra original. ¿Cuál es la dilución final?

1. Uno a veinticinco, resultado de elevar cinco al cuadrado en el cálculo
2. Uno a diez, resultado de multiplicar el número de pasos por dos
3. Uno a treinta y dos, resultado de elevar dos a la quinta potencia
4. Uno a dieciséis, resultado de elevar dos a la cuarta potencia del total

Cada paso divide entre dos y las diluciones seriadas se multiplican entre sí: dos elevado a cinco da treinta y dos, es decir una dilución uno a treinta y dos. Fuente: textos de referencia de química analítica y documentos CLSI.

28. Con creatinina urinaria de 120 mg/dL, volumen de 1 440 mL en 24 horas y creatinina plasmática de 1,2 mg/dL, ¿cuál es la depuración de creatinina?

1. 1,2 mL/min, dividiendo la concentración plasmática entre la urinaria del enunciado
2. 144 mL/min, empleando el volumen total de la orina de 24 horas sin convertirlo en volumen por minuto
3. 100 mL/min, aplicando el producto de concentración urinaria por volumen minuto entre la plasmática
4. 120 mL/min, tomando directamente la concentración urinaria como resultado, sin realizar ningún cálculo

El volumen minuto es 1 440 entre 1 440, es decir 1 mL/min; la depuración es 120 por 1 entre 1,2, lo que da 100 mL/min. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI sobre depuración.

29. Con creatinina urinaria de 100 mg/dL, volumen de 1 500 mL en 24 horas y creatinina plasmática de 1,0 mg/dL, ¿cuál es la depuración aproximada?

1. 150 mL/min, empleando el volumen total sin dividirlo entre los minutos del día
2. 104 mL/min, tras convertir el volumen de 24 horas en volumen por minuto
3. 1 500 mL/min, tomando el volumen de orina como resultado final del cálculo
4. 69 mL/min, dividiendo el volumen minuto entre la concentración urinaria medida

El volumen minuto es 1 500 entre 1 440, es decir 1,04 mL/min; la depuración es 100 por 1,04 entre 1,0, lo que da 104 mL/min. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI sobre depuración.

30. Una depuración de 104 mL/min se corrige por una superficie corporal de 1,60 m2 con el factor 1,73. ¿Cuál es el valor corregido?

1. 180 mL/min por 1,73 m2, multiplicando la depuración por la superficie corporal
2. 96 mL/min por 1,73 m2, multiplicando por el cociente entre la superficie y 1,73
3. 104 mL/min por 1,73 m2, ya que la corrección no modifica el valor obtenido
4. 112 mL/min por 1,73 m2, multiplicando por el cociente entre 1,73 y la superficie

La corrección multiplica por 1,73 y divide entre la superficie del paciente: 104 por 1,73 entre 1,60 da 112 mL/min normalizados. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI sobre depuración.

31. Aplicando la fórmula del enunciado, en la que la depuración estimada es igual a 140 menos la edad, por el peso, dividido entre 72 por la creatinina, ¿qué valor corresponde a un paciente de 60 años, 72 kg y creatinina de 1,0 mg/dL?

1. 6 mL/min, resultado de dividir el peso entre el producto de 72 por la creatinina
2. 57 mL/min, resultado de dividir por la edad en lugar de por el factor 72
3. 115 mL/min, resultado de omitir la creatinina en el denominador del cálculo
4. 80 mL/min, sustituyendo los valores en la fórmula tal como se enuncia

Sustituyendo: 140 menos 60 da 80; multiplicado por 72 da 5 760; dividido entre 72 por 1,0 da 80 mL/min. La fórmula es una estimación, no una medición directa. Fuente: textos de referencia de química clínica; la fórmula se da íntegra en el enunciado.

32. Con colesterol total de 200 mg/dL, colesterol de alta densidad de 50 mg/dL y triglicéridos de 150 mg/dL, ¿cuál es el colesterol de baja densidad estimado?

1. 30 mg/dL, tomando solo la quinta parte de los triglicéridos como resultado final
2. 150 mg/dL, restando únicamente el colesterol de alta densidad del total medido
3. 120 mg/dL, restando el de alta densidad y la quinta parte de los triglicéridos
4. 100 mg/dL, restando del total la mitad de los triglicéridos y el de alta densidad

La estimación resta del colesterol total el de alta densidad y los triglicéridos divididos entre cinco: 200 menos 50 menos 30 da 120 mg/dL. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI sobre perfil lipídico.

33. Con colesterol total de 240 mg/dL, de alta densidad de 40 mg/dL y triglicéridos de 200 mg/dL, ¿cuál es el colesterol de baja densidad estimado?

1. 120 mg/dL, valor que resultaría de restar los triglicéridos completos al total
2. 200 mg/dL, valor que resultaría de restar solo el colesterol de alta densidad
3. 160 mg/dL
4. 80 mg/dL, valor que resultaría de dividir el colesterol total entre tres partes

Aplicando la fórmula, 240 menos 40 menos 40 da 160 mg/dL. La estimación deja de ser válida con triglicéridos muy elevados, situación en la que se emplea medición directa. Fuente: documentos de consenso CLSI sobre perfil lipídico.

34. ¿Por qué la estimación del colesterol de baja densidad pierde validez con triglicéridos muy altos?

1. Porque el colesterol de alta densidad se degrada en presencia de triglicéridos muy elevados en el suero
2. Porque el analizador no puede medir el colesterol total cuando la muestra está intensamente lipémica
3. Porque la relación fija entre triglicéridos y lipoproteínas de muy baja densidad deja de cumplirse
4. Porque la fórmula exige que la muestra proceda siempre de sangre capilar en ayunas

La estimación asume que el colesterol de las lipoproteínas de muy baja densidad equivale a la quinta parte de los triglicéridos, supuesto que se rompe con concentraciones altas. Fuente: documentos de consenso CLSI y textos de referencia de química clínica.

35. Con proteínas totales de 7,2 g/dL y albúmina de 3,4 g/dL, ¿cuál es la globulina y la relación entre ambas?

1. Globulina 3,8 g/dL y relación 0,89 entre albúmina y globulina
2. Globulina 10,6 g/dL y relación 2,12 entre albúmina y globulina
3. Globulina 3,8 g/dL y relación 1,12 entre albúmina y globulina
4. Globulina 3,4 g/dL y relación 1,00 entre albúmina y globulina

La globulina es la diferencia entre proteínas totales y albúmina: 7,2 menos 3,4 da 3,8 g/dL; la relación es 3,4 entre 3,8, es decir 0,89. Fuente: textos de referencia de química clínica y documentos CLSI.