🧪 Inmunohematología y banco de sangre

1. ¿En qué consiste la tipificación ABO por partida doble?

1. En una prueba con antisueros y otra con antiglobulina humana sobre la misma muestra
2. En una prueba directa con antisueros repetida dos veces por dos analistas distintos
3. En una prueba directa con antisueros y una inversa con eritrocitos reactivos
4. En una prueba de aglutinación seguida de una prueba de elución sobre el mismo tubo

La prueba directa detecta antígenos en el eritrocito y la inversa detecta anticuerpos en el plasma; ambas deben concordar antes de asignar un grupo. Fuente: estándares de la AABB para bancos de sangre y servicios de transfusión.

2. ¿Qué anticuerpos ABO se consideran de aparición natural?

1. Los dirigidos contra los antígenos del sistema Kidd tras una transfusión previa
2. Los dirigidos contra el antígeno D del sistema Rh en personas D negativas
3. Los dirigidos contra cualquier antígeno eritrocitario de baja frecuencia poblacional
4. Los dirigidos contra los antígenos ABO ausentes en el propio individuo

Los anticuerpos ABO aparecen sin estímulo transfusional aparente, son de clase inmunoglobulina M y su presencia se comprueba en la prueba inversa. El anti-D requiere estímulo inmunizante. Fuente: estándares de la AABB.

3. La prueba directa indica grupo A y la inversa indica grupo O. ¿Qué ha ocurrido?

1. La muestra está caducada y debe rechazarse sin investigar nada más al respecto
2. El paciente es de grupo A y puede transfundirse componente de ese mismo grupo
3. El paciente es de grupo O y puede transfundirse componente de ese mismo grupo
4. Hay una discrepancia ABO que debe resolverse antes de asignar cualquier grupo

Cuando la prueba directa y la inversa no concuerdan existe una discrepancia; hasta resolverla no se asigna grupo y, si hay urgencia, se emplea componente de grupo O. Fuente: estándares de la AABB.

4. ¿Qué grupo de causas explica una reacción débil o ausente en la prueba inversa?

1. Presencia de un subgrupo de A con expresión débil del antígeno en el eritrocito
2. Edad muy temprana, hipogammaglobulinemia y descenso de títulos en personas mayores
3. Autoanticuerpos fríos que aglutinan los eritrocitos reactivos a temperatura ambiente
4. Formación de rouleaux por exceso de proteínas plasmáticas en la muestra estudiada

La prueba inversa depende de los anticuerpos del plasma: la ausencia o el descenso de esos anticuerpos explica la reacción débil. Las otras causas afectan a la prueba directa o producen reactividad inesperada. Fuente: estándares de la AABB.

5. Un paciente con paraproteinemia muestra aglutinación inesperada en la prueba inversa. ¿Qué debe sospecharse primero?

1. Un subgrupo de A débil, que exigiría antisueros adicionales para su correcta identificación
2. Formación de rouleaux, que se distingue lavando los eritrocitos con solución salina
3. Una aloinmunización previa frente a los antígenos del sistema Rh que posee el paciente
4. Un error de identificación de la muestra que obligaría a repetir toda la extracción

El exceso de proteínas plasmáticas favorece el apilamiento eritrocitario, que puede leerse como aglutinación; el reemplazo del plasma por salina lo deshace y resuelve la duda. Fuente: estándares de la AABB.

6. Una discrepancia ABO aparece en un paciente transfundido masivamente días antes. ¿Qué explicación es más probable?

1. La aparición espontánea de un nuevo antígeno en los eritrocitos del paciente
2. La presencia de una población doble de eritrocitos de origen transfusional
3. La pérdida definitiva de los anticuerpos naturales del sistema ABO del plasma
4. Un error del antisuero comercial empleado en la prueba directa de la muestra

La transfusión reciente introduce eritrocitos del donante y puede producir campo mixto en la prueba directa; el antecedente transfusional es información imprescindible para el banco de sangre. Fuente: estándares de la AABB.

7. ¿Qué antígeno define la condición Rh positivo o negativo en la práctica transfusional?

1. El antígeno C, cuya presencia determina la designación del paciente estudiado
2. El antígeno D, cuya presencia o ausencia determina la designación del paciente
3. El antígeno E, cuya ausencia determina la condición Rh negativa del paciente
4. El antígeno c, cuya presencia determina la condición Rh positiva del paciente

En la práctica transfusional la designación se basa exclusivamente en el antígeno D; los demás antígenos del sistema se estudian cuando hay aloinmunización o fenotipado. Fuente: estándares de la AABB.

8. ¿Qué distingue el D débil del D parcial?

1. El débil solo aparece en donantes y el parcial únicamente en receptores de sangre
2. El débil carece de algunos epítopos y el parcial expresa menos antígeno completo
3. El débil expresa menos antígeno completo y el parcial carece de algunos epítopos
4. El débil se detecta con antiglobulina y el parcial no puede detectarse por ningún medio

En el D débil la cantidad de antígeno es menor pero está completo; en el D parcial faltan epítopos, lo que permite formar anti-D frente a los que el individuo no posee. Fuente: estándares de la AABB.

9. ¿Por qué un donante con D débil se considera Rh positivo?

1. Porque sus eritrocitos pueden inmunizar a un receptor D negativo que los reciba
2. Porque el laboratorio no dispone de reactivos capaces de detectar esa variante
3. Porque la normativa clasifica a todos los donantes como Rh positivos por defecto
4. Porque el antígeno D débil desaparece durante el almacenamiento del componente

La cantidad de antígeno, aunque reducida, basta para inmunizar; por eso el donante se etiqueta como Rh positivo mientras el receptor con D débil suele manejarse como negativo según la política vigente. Fuente: estándares de la AABB.

10. ¿Qué diferencia hay entre la prueba de antiglobulina directa y la indirecta?

1. La directa emplea el suero del paciente y la indirecta emplea sus propios eritrocitos lavados
2. La directa detecta lo unido in vitro y la indirecta lo que quedó unido in vivo al eritrocito
3. La directa detecta lo ya unido in vivo y la indirecta lo unido tras incubación in vitro
4. La directa requiere células control y la indirecta no las necesita nunca en ningún caso

La prueba directa se realiza sobre eritrocitos del paciente sin incubación previa; la indirecta incuba suero con eritrocitos reactivos y luego añade antiglobulina. Fuente: estándares de la AABB.

11. ¿Cuál es la causa clásica de un falso negativo en la prueba de antiglobulina?

1. La adición de un exceso de antiglobulina humana al tubo antes de centrifugar
2. El lavado excesivo de los eritrocitos, que elimina el anticuerpo unido a la célula
3. La incubación demasiado prolongada del suero con los eritrocitos reactivos
4. El lavado insuficiente de los eritrocitos, que deja globulinas libres neutralizantes

Las globulinas libres que quedan tras un lavado incompleto neutralizan la antiglobulina y anulan la reacción; por eso las células control deben aglutinar en todo resultado negativo. Fuente: estándares de la AABB.

12. ¿Qué debe hacerse si las células control de Coombs no aglutinan en un tubo negativo?

1. Informar el resultado como positivo débil por precaución ante la duda existente
2. Informar el resultado negativo, ya que las células control son solo orientativas
3. Añadir más antiglobulina al mismo tubo y volver a centrifugar para leer de nuevo
4. Considerar la prueba no válida y repetirla desde el inicio con lavados adecuados

Las células control demuestran que la antiglobulina estaba activa y que el lavado fue suficiente; si no aglutinan, el negativo no es interpretable y la prueba se repite. Fuente: estándares de la AABB.

13. ¿Qué finalidad tiene el tamizaje de anticuerpos irregulares?

1. Medir la concentración total de inmunoglobulinas presentes en el plasma
2. Determinar el grupo ABO del paciente con mayor exactitud que la prueba directa
3. Comprobar la compatibilidad entre dos unidades del mismo grupo sanguíneo
4. Detectar aloanticuerpos clínicamente significativos antes de una transfusión

El tamizaje emplea eritrocitos reactivos de fenotipo conocido y detecta anticuerpos distintos de los ABO; un resultado positivo abre el estudio de identificación. Fuente: estándares de la AABB.

14. ¿Qué significa que un anticuerpo sea clínicamente significativo?

1. Que puede causar reacción transfusional o enfermedad hemolítica del recién nacido
2. Que reacciona solo a temperatura ambiente y carece de consecuencias en el paciente
3. Que aparece únicamente en la prueba inversa del sistema ABO del paciente
4. Que solo se detecta en el laboratorio con métodos de biología molecular avanzados

La significación clínica se define por la capacidad de destruir eritrocitos transfundidos o fetales; suele asociarse a anticuerpos de clase inmunoglobulina G reactivos a temperatura corporal. Fuente: estándares de la AABB.

15. ¿En qué se basa la exclusión de especificidades en un panel de identificación?

1. En descartar los antígenos presentes en células que sí reaccionaron con el suero
2. En descartar los antígenos presentes en células que no reaccionaron con el suero
3. En seleccionar los antígenos de mayor frecuencia poblacional en la lista del panel
4. En comparar el patrón obtenido con el fenotipo de los eritrocitos del propio paciente

Una célula negativa para el suero excluye los antígenos que expresa, con las precauciones ligadas a la dosificación; el fenotipo del paciente sirve después para confirmar la coherencia. Fuente: estándares de la AABB.

16. ¿Por qué se comprueba el fenotipo del paciente al identificar un aloanticuerpo?

1. Porque la normativa exige el fenotipo completo en toda muestra de banco de sangre
2. Porque el fenotipo determina el grupo ABO que debe asignarse al paciente
3. Porque el fenotipo sustituye al panel de identificación en pacientes transfundidos
4. Porque un paciente no forma de modo aloinmune anticuerpos contra antígenos que posee

La coherencia entre el anticuerpo identificado y el fenotipo del paciente es un control lógico de la identificación; la transfusión reciente puede dificultar el fenotipado. Fuente: estándares de la AABB.

17. ¿Qué es el efecto de dosificación en inmunohematología?

1. La reacción más intensa frente a células homocigotas para el antígeno estudiado
2. La reacción más intensa frente a células heterocigotas para el antígeno estudiado
3. La pérdida de reactividad del suero tras varias diluciones sucesivas del mismo
4. La necesidad de duplicar el volumen de suero en todas las pruebas del panel

Algunos anticuerpos reaccionan con más fuerza frente a células con doble dosis del antígeno, lo que condiciona las reglas de exclusión durante la identificación. Fuente: estándares de la AABB.

18. ¿Qué caracteriza a los anticuerpos del sistema Kidd desde el punto de vista transfusional?

1. Son de clase inmunoglobulina M y no atraviesan nunca la barrera placentaria
2. Reaccionan siempre en frío y carecen por completo de significación clínica
3. Suelen ser evanescentes y se asocian a reacciones hemolíticas de tipo tardío
4. Se detectan solo en la fase salina inmediata sin necesidad de antiglobulina

El descenso del título con el tiempo hace que estos anticuerpos escapen al tamizaje y reaparezcan tras una nueva exposición, lo que explica su papel en las reacciones tardías. Fuente: estándares de la AABB.

19. ¿Qué efecto tiene el tratamiento enzimático sobre los antígenos del sistema Duffy?

1. No los modifica, de modo que la enzima no aporta información en ese sistema
2. Los potencia, aumentando la reactividad de los anticuerpos dirigidos contra ellos
3. Los destruye, lo que ayuda a separar esa especificidad de otras en el panel
4. Los convierte en antígenos del sistema Kidd durante la incubación con la enzima

El tratamiento con enzimas proteolíticas destruye ciertos antígenos y potencia otros; ese comportamiento diferencial es una herramienta clásica en la resolución de mezclas de anticuerpos. Fuente: estándares de la AABB.

20. ¿Qué distingue a los anticuerpos reactivos en frío de los reactivos a temperatura corporal?

1. Los fríos suelen ser de clase inmunoglobulina G y de gran relevancia transfusional
2. Los fríos suelen ser de clase inmunoglobulina M y con menor relevancia transfusional
3. Los reactivos a temperatura corporal son siempre de clase inmunoglobulina M pentamérica
4. Los reactivos a temperatura corporal no requieren nunca la prueba de antiglobulina

Los anticuerpos fríos suelen ser pentaméricos y aglutinan de forma directa a baja temperatura; los reactivos a temperatura corporal suelen ser monoméricos y requieren antiglobulina. Fuente: estándares de la AABB.

21. Una prueba de antiglobulina directa positiva con panel reactivo frente a todas las células sugiere qué situación?

1. Un error de lavado que puede resolverse repitiendo la prueba una sola vez más
2. Un aloanticuerpo único dirigido frente a un antígeno de muy baja frecuencia poblacional
3. Un autoanticuerpo, que exige técnicas de adsorción para descartar aloanticuerpos ocultos
4. Una contaminación del panel con el suero de otro paciente del mismo turno de trabajo

La reactividad frente a todas las células con antiglobulina directa positiva orienta a autoanticuerpo; el riesgo es que enmascare aloanticuerpos, que se buscan mediante adsorción. Fuente: estándares de la AABB.

22. ¿Qué finalidad tiene una técnica de adsorción en presencia de autoanticuerpo?

1. Convertir el autoanticuerpo en aloanticuerpo para poder tipificar al paciente
2. Aumentar la concentración del autoanticuerpo para facilitar su identificación
3. Eliminar el complemento del suero antes de realizar la prueba de compatibilidad
4. Retirar el autoanticuerpo para descubrir aloanticuerpos que quedaban enmascarados

La adsorción con eritrocitos propios tratados o con células seleccionadas retira la reactividad autoinmune y deja visible cualquier aloanticuerpo subyacente. Fuente: estándares de la AABB.

23. ¿Qué comprueba una prueba de compatibilidad serológica completa?

1. Que el suero del receptor no reacciona con los eritrocitos de la unidad seleccionada
2. Que la unidad seleccionada tiene exactamente el mismo fenotipo completo que el receptor
3. Que la unidad seleccionada no contiene ningún anticuerpo irregular en su plasma residual
4. Que el receptor no ha recibido ninguna transfusión durante los tres meses anteriores

La prueba de compatibilidad enfrenta suero del receptor con eritrocitos del donante y detecta incompatibilidad ABO y aloanticuerpos frente a antígenos de esa unidad. Fuente: estándares de la AABB.

24. ¿Qué condiciones exige una prueba de compatibilidad electrónica?

1. Una única determinación de grupo del receptor obtenida en cualquier momento previo
2. Un sistema informático validado con dos determinaciones de grupo y tamizaje negativo
3. Un tamizaje de anticuerpos positivo confirmado antes de liberar la unidad elegida
4. Una prueba serológica completa realizada en paralelo con el sistema informático

La compatibilidad electrónica requiere requisitos estrictos de sistema, historial y tamizaje negativo; su implantación se valida y documenta antes de sustituir a la prueba serológica. Fuente: estándares de la AABB.

25. Una unidad resulta incompatible en la prueba cruzada con tamizaje de anticuerpos negativo. ¿Qué debe considerarse?

1. Un anticuerpo frente a un antígeno de baja frecuencia ausente en las células de tamizaje
2. Un error del tamizaje que obligaría a repetir toda la determinación del grupo ABO
3. Una incompatibilidad ABO, que el tamizaje de anticuerpos habría detectado sin ninguna duda
4. Un problema del componente que obliga a descartar toda la nevera del banco

Las células de tamizaje no expresan todos los antígenos: un anticuerpo frente a un antígeno de baja frecuencia solo aparece en la prueba cruzada con la unidad que lo posee. Fuente: estándares de la AABB.

26. ¿Qué grupo eritrocitario se emplea en una urgencia sin tipificación disponible?

1. Grupo A, por ser el más frecuente en la mayoría de las poblaciones estudiadas
2. Grupo AB, por carecer de anticuerpos anti-A y anti-B en su componente plasmático
3. Grupo O, por carecer de los antígenos A y B en la superficie del eritrocito
4. Cualquier grupo, siempre que la unidad esté dentro de su fecha de caducidad

Los eritrocitos de grupo O no llevan antígenos A ni B y por eso se emplean cuando no hay tipificación; el plasma de grupo AB es el que carece de esos anticuerpos. Fuente: estándares de la AABB.

27. ¿Qué grupo se prefiere al transfundir plasma cuando no se conoce el grupo del receptor?

1. Grupo AB, porque su plasma carece de anticuerpos anti-A y anti-B
2. Grupo O, porque sus eritrocitos carecen de antígenos A y B en la superficie
3. Grupo A, porque su plasma contiene únicamente anticuerpos frente al antígeno B
4. Grupo B, porque su plasma contiene únicamente anticuerpos frente al antígeno A

En componentes plasmáticos la compatibilidad se invierte respecto a los eritrocitos: el plasma de grupo AB no lleva anticuerpos ABO y es el compatible con cualquier receptor. Fuente: estándares de la AABB.

28. ¿Cómo se obtienen los componentes a partir de una unidad de sangre total?

1. Por filtración a través de una membrana que retiene selectivamente cada componente
2. Por centrifugación diferencial que separa capas según la densidad de cada elemento
3. Por congelación fraccionada que separa los elementos según su punto de fusión
4. Por electroforesis del contenido de la bolsa en un campo eléctrico controlado

La centrifugación a distintas velocidades separa eritrocitos, plasma y plaquetas; el fraccionamiento posterior del plasma permite obtener otros componentes. Fuente: estándares de la AABB y normas de la FDA para establecimientos de sangre.

29. ¿Qué finalidad tiene la irradiación de un componente celular?

1. Eliminar los anticuerpos irregulares presentes en el plasma residual del componente
2. Esterilizar el componente frente a bacterias contaminantes durante su almacenamiento
3. Prolongar de forma indefinida la caducidad del componente irradiado en la nevera
4. Inactivar los linfocitos capaces de proliferar en el receptor tras la transfusión

La irradiación impide la proliferación de linfocitos del donante; no esteriliza el componente ni prolonga su caducidad, que en general se acorta. Fuente: estándares de la AABB.

30. ¿Qué objetivo persigue la reducción de leucocitos de un componente?

1. Aumentar la concentración de eritrocitos por unidad de volumen del componente
2. Disminuir reacciones febriles y la exposición a antígenos leucocitarios del donante
3. Eliminar los anticuerpos irregulares presentes en el plasma residual de la unidad
4. Prolongar la caducidad del componente más allá de la fecha original asignada

La reducción de leucocitos disminuye reacciones febriles no hemolíticas y la aloinmunización frente a antígenos leucocitarios; no modifica el hematocrito ni prolonga la caducidad. Fuente: estándares de la AABB.

31. ¿Por qué las plaquetas se conservan en agitación continua y a temperatura ambiente controlada?

1. Porque la temperatura ambiente permite prolongar la caducidad de forma indefinida
2. Porque el frío favorece el crecimiento bacteriano dentro de la bolsa de plaquetas
3. Porque la agitación impide la formación de anticuerpos dentro del componente
4. Porque el frío y la falta de agitación deterioran su función y su viabilidad

Las plaquetas pierden función a baja temperatura y requieren intercambio gaseoso, que la agitación facilita; a cambio, la conservación a esa temperatura limita la caducidad por riesgo bacteriano. Fuente: estándares de la AABB.

32. Un donante pesa 45 kg y la fórmula indica multiplicar el peso entre 50 por 450 mL. ¿Qué volumen debe extraerse?

1. 360 mL, aplicando una proporción de cuarenta sobre cincuenta en el mismo cálculo
2. 450 mL, porque el volumen estándar no se modifica nunca por el peso del donante
3. 500 mL, aumentando el volumen para compensar el menor peso corporal del donante
4. 405 mL, aplicando la proporción del peso indicada en la fórmula del enunciado

El cálculo es 45 dividido entre 50 y multiplicado por 450, lo que da 405 mL. El ajuste evita un exceso relativo de anticoagulante en el componente. Fuente: estándares de la AABB sobre donantes de bajo peso.

33. Con un volumen extraído de 405 mL sobre un estándar de 450 mL y 63 mL de anticoagulante, ¿cuánto anticoagulante debe retirarse?

1. 6,3 mL, aplicando la proporción entre el volumen no extraído y el estándar
2. 63 mL, retirando todo el anticoagulante de la bolsa antes de la extracción
3. 45 mL, retirando una cantidad igual a la diferencia de volumen de sangre
4. 0 mL, porque el anticoagulante nunca se ajusta al volumen realmente extraído

La proporción no extraída es 45 sobre 450, es decir la décima parte; el diez por ciento de 63 mL da 6,3 mL de anticoagulante a retirar. Fuente: estándares de la AABB sobre donantes de bajo peso.

34. Un donante pesa 48 kg. Con la misma fórmula, ¿qué volumen corresponde extraer y cuánto anticoagulante retirar?

1. 480 mL de sangre y 4,20 mL de anticoagulante añadidos a la bolsa
2. 450 mL de sangre sin retirar nada de anticoagulante de la bolsa empleada
3. 400 mL de sangre y 7,00 mL de anticoagulante retirados de la bolsa
4. 432 mL de sangre y 2,52 mL de anticoagulante retirados de la bolsa

El volumen es 48 entre 50 por 450, es decir 432 mL; la fracción no extraída es 18 entre 450, y aplicada a 63 mL da 2,52 mL de anticoagulante a retirar. Fuente: estándares de la AABB.

35. ¿Qué finalidad tiene el desvío de los primeros mililitros de la donación a una bolsa satélite?

1. Medir el hematocrito del donante antes de completar el volumen total de la unidad
2. Comprobar el flujo de la vena antes de iniciar la recolección completa de la unidad
3. Obtener una muestra con un anticoagulante distinto al que lleva la bolsa principal
4. Reducir la contaminación bacteriana procedente del tapón cutáneo de la punción

El desvío inicial retira el fragmento de piel que la aguja puede arrastrar, principal fuente de contaminación bacteriana de la unidad; ese volumen sirve además para las muestras de laboratorio. Fuente: estándares de la AABB.